
ется  искомый  ген.  Так,  для  клонирования  проинсу-
линового гена следует использовать (3-клетки подже-
лудочной железы, так как именно для них характерно 
высокое  содержание  проинсулиновой  мРНК.  Сум-
марную клеточную мРНК с помощью центрифугиро-
вания в градиенте сахарозы можно разделить на фрак-
ции,  впрочем,  довольно  сильно  перекрывающиеся. 
При такой грубой очистке число посторонних моле-
кул мРНК в препарате уменьшается. Затем с молекул 
мРНК, попавших в нужный нам диапазон молекуляр-
ных масс (для белка таких размеров, как проинсулин, 
длина  соответствующей  молекулы  мРНК  составит 
примерно 25 000 нуклеотидов, или 25 т.п.н.), снима-
ются ДНК-копии. 
Синтез ДНК - копий осуществляется ферментом, 
называемым обратной транскриптазой, или реверта-
зой (еще одно его название — РНК-зависимая ДНК-
полимераза), который  выделяют обычно из соответ-
ствующих  РНК-содержащих  вирусов.  Чтобы  этот 
фермент начал работать, требуется короткая (около 10 
нуклеотидов)  одноцепочечная  ДНК-затравка;  для 
этой цели, как правило, используют oligo(dT). Затра-
вочная ДНК самопроизвольно образует двухцепочеч-
ный  комплекс  с  отрезком poly(dA), который  всегда 
присутствует  на  З'-конце  молекул  эукариотической 
мРНК (гл. 22). По  завершении стадии  копирования 
исходную цепь РНК разрушают (деполимеризуют). 
Деполимеризацию  исходной  РНК-цепочки 
осуществляют путем щелочного гидролиза. Цепи ДНК 
устойчивы к обработке  щелочью,  а РНК полностью 
де-полимеризуется. Получившаяся в результате ДНК 
является одноцепочечной (оц), лишь на конце моле-
кулы образуется «шпилька» с небольшой петлей. Та-
кая шпилька образуется потому, что на 5'-конце боль-
шинства  мРНК  имеется  последовательность,  одна 
половина  которой  комплементарна  другой (палин-
дром) и которая в результате копирования оказывает-
ся и в кДНК. Таким образом, концевой участок цепоч-
ки  кДНК,  где  расположена  эта  последовательность, 
может замыкаться сам на себя с образованием петли и 
отрезка двойной спирали. 
Двухцепочечную (дц)  кДНК получают путем достра-
ивания оц-кДНК до двухцепочечной формы, выпол-
няемого  ферментом  ДНК-полимеразой I. Для  того 
чтобы этот фермент функционировал, также в прин-
ципе  требуется  затравочная  ДНК,  однако  здесь  ее 
вполне заменяет короткий отрезок двойной спирали, 
образуемый шпилькой. На одном из концов такой дц-
кДНК  все  еще  остается  одноцепочечная  петля;  она 
удаляется  с  помощью  фермента  нуклеазы S1. Этот 
фермент разрезает петлю и, кроме того, подравнивает 
цепочки ДНК, удаляя всю оставшуюся оц-ДНК. Пос-
ле такой обработки кДНК можно встраивать в вектор. 
Вектор  -  это  нечто  вроде  молекулярного «такси», 
способного переносить чужую ДНК внутрь бактери-
альной  клетки  таким  образом,  чтобы  она  могла  там 
реплицироваться. Существует два основных типа век- 
торов:  бактериальные  плазмиды  и  бактериофаги. 
Здесь мы рассмотрим только первый тип. 
Плазмиды — это встречающиеся в клетках внехромо-
сомные  элементы,  представляющие  собой  замкнутые 
кольцевые  молекулы  дц-ДНК (гл. 26). Они  способны 
реплицироваться независимо от геномной ДНК бакте-
рий. Часто плазмиды содержат гены, белковые продук-
ты которых обеспечивают нечувствительность к тем или 
иным антибиотикам. Этим свойством пользуются для 
отделения бактерий, содержащих плазмиды («+»-бакте-
рии),  от «—»-бактерий,  лишенных  плазмид.  Чтобы 
включить кДНК в плазмиду, замкнутое кольцо плазми-
ды надо «разомкнуть». Для этого плазмиды подвергают 
воздействию рестриктаз. 
Рестриктаза -  (гл. 18) разрезает  дц-ДНК  по 
определенным  нуклеотидным  последовательностям, 
называемым  участками  рестрикции (обычно  это 
короткие па-линдромные последовательности); разные 
рестриктазы узнают разные палиндромы. В плазмидах, 
встречающихся в природе, часто бывает много таких 
участков  для  каждой  из  рестриктаз.  Поскольку  в 
идеальном случае нам нужна одна-единственная точка 
разреза,  есть  смысл  в  направленном  отборе  или 
«конструировании»  плазмид  с  таким  свойством. 
Например, в плазмиде pBR322, широко используемой 
в качестве вектора, для многих рестриктаз имеется лишь 
по одному участку  рестрикции;  в ней  также имеются 
гены, обеспечивающие резистентность к ампициллину 
и  пенициллину;  и  в  ней  нет  некоторых 
«несущественных»  генов,  имевшихся в ее прототипе. 
Оставлены  лишь  те  гены,  которые  необходимы  для 
осуществления  функций  трансформации  бактерий  и 
репликации плазмиды. 
Сшивание (лигирование)  —  процедура,  в  ходе  которой 
чужеродная ДНК встраивается между (или сшивается 
с)  двумя  концами  плазмидной  ДНК  с  помощью 
фермента, называемого ДНК-лигазой. Чтобы эта опе-
рация могла осуществиться, необходимо, чтобы кон-
цы кДНК и плазмидной ДНК были «липкими». Для 
этого на концах должны быть оц-последовательности, 
способные образовывать комплекс друг с другом через 
спаривание оснований и обеспечивающие сцепление 
двух  пар  концов.  Так  образуется  плазмида,  которая 
называется рекомбинантной. Описываемая ниже про-
цедура, с помощью которой это достигается, называ-
ется методом гомополимерных концов. Существует еще 
одна процедура,  называемая  связыванием по  сайтам 
рестрикции, но мы ее рассматривать не будем. 
Метод  гомополимерных  концов  основан  на 
присоединении  к 3'-концам  цепей,  образующих  дц-
ДНК,  коротких  отрезков  оц-ДНК  с  регулярной 
последовательностью (гомополимерных).  Если 
каждый  подобный  гомополимер  состоит  из 
нуклеотидов  одного  вида  и  если  два  таких 
гомополимера  с  взаимно  комплементарными 
основаниями  присоединены  соответственно  к 
плазмиде и к кДНК, то последние, оказавшись рядом, 
замкнутся  друг  на  друга  с  образованием 
рекомбинантной плазмиды.