Ярыгин В.Н., Васильева В.И., Волков И.Н., Синельщикова В.В. Биология. Книга 1

Подождите немного. Документ загружается.



371

дифференцированной клетки (см. рис. 5.3). Энуклеацию яйцеклетки проводили

большими дозами ультрафиолетового облучения, что приводило к

функциональному удалению ее ядра. Для доказательства того, что в развитии

зародыша участвует пересаженное ядро соматической клетки, применили

генетическое маркирование. Яйцеклетку брали из линии лягушек с двумя

ядрышками в ядре (соответственно двум ядрышковым организаторам в двух

гомологичных хромосомах), а ядро клет

ки донора — из линии, имеющей в ядрах

только одно ядрышко вследствие гетерозиготности по делении ядрышкового

организатора. Все ядра в клетках особи, полученной в результате трансплантации

ядра, имели только одно ядрышко.

Вместе с тем опыты Гердона обнаружили многие другие важнейшие

закономерности. Во-первых, они еще раз подтвердили предположение Т. Моргана о

решающем знач

ении взаимодействия цитоплазмы и ядра в жизнедеятельности

клеток и развитии организма. Во-вторых, в многочисленных экспериментах было

показано, что чем старше стадия зародыша-донора, из клеток которого брали ядро

для пересадки, тем в меньшем проценте случаев развитие оказывалось полностью

завершенным, т.е. достигало стадий головастика, а затем лягушки.

Рис. 8.6. Опыт, показывающий сохранение функциональных свойств

наследственного материала в соматической дифференцированной клетке моркови:

1—срез корня в питательной среде, 2— профилирующие клетки в культуре, 3—

клетка, изолированная из культуры, 4—ранний зародыш, 5—более поздний

зародыш, 6—молодое растение, 7—взрослое растение



372

Рис. 8.7. Зависимость успеха пересадки ядер из дифференцированной клетки в

яйцеклетку от возраста донора (I—VI) ядра: I—бластула, II—гаструла, III—нейрула,

IV—появление мышечной реакции, V—начало сердечной деятельности и

вылупления, VI—активное плавание; 1—ранняя гаструла, 2—нейрула, 3—

плавающий головастик, 4—питающийся головастик;

вверху изображена схема опыта

В большинстве случаев развитие останавливалось на более ранних стадиях.

Зависи

мость результатов пересадки от стадии зародыша-донора ядер представлена

на рис. 8.7. Анализ зародышей, останавливающихся в развитии после пересадки

ядра, показал множество хромосомных аномалий в их ядрах. Другой причиной

остановки развития считают неспособность ядер дифференцированных клеток к

восстановлению синхронной репликации ДНК.

Главный вывод, который вытекает из этого опыта, заключается в том, чт

наследственный материал соматических клеток способен сохраняться полноценным

не только в количественном, но и в функциональном отношении,



373

цитодифференцировка не является следствием недостаточности наследственного

материала.

Самым последним достижением в этой области является получение овечки

Долли. Ученые не исключают возможности воспроизведения подобным же образом,

т.е. путем пересадки ядер, генетических двойников человека. Следует однако

отдавать себе отчет, что клонирование человека кроме научно-технологического

имеет также этический и психологический аспекты.

Гипотеза дифференциальной экспрессии ген

ов в признак принимается в

настоящее время в качестве основного механизма цитодифференцировки.

Общие принципы регуляции экспресии генов изложены в гл. 3.6.6. В данной

главе делается попытка выяснить механизмы регуляции избирательной

проявляемости генов в признак применительно к развивающемуся многоклеточному

организму, у которого судьбы отдельных групп клеток неотрывны от

пространственно-временных аспектов индивидуального развития. Уровн

регуляции дифференциальной экспрессии генов соответствуют этапам реализации

информации в направлении ген → полипептид → признак и включают не только

внутриклеточные процессы, но тканевые и организменные.

Экспрессия гена в признак — это сложный этапный процесс, который можно

изучать разными методами: электронной и световой микроскопией, биохимически и

другими. На схеме 8.3 прив

едены основные этапы экспрессии генов и методы, с

помощью которых их можно изучать.

Схема 8.3

Этапы экспресии генов Методы их изучения

Активность генов

Транскрипция, первичный РНК-

транскрипт (ядерные РНК)

мРНК цитоплазмы

Трансляция (белки — продукты

генной активности)

Морфологическая дифференцировка

Строение и жизнеспособность

зародыша

Визуальное наблюдение строения

соответствующих участков хромосомы

(электронная и световая микроскопия)

Метод двумерного гельэлектрофореза

Биохимический метод

Цитологический метод, цитохимический

метод

Гибридологический и сравнительно

эмбриологический методы



374

Визуальное наблюдение в электронный микроскоп, как наиболее прямой

подход к изучению уровня транскрипции, т.е. генной активности, проведено в

отношении только отдельных генов — рибосомных, генов хромосом типа ламповых

щеток и некоторых других (см. рис. 3.66). На элекгронограммах отчетливо видно,

что одни гены транскрибируются активнее других. Хорошо различимы и

неактивные гены.

Особое место занимает изучение политенных хромосом. Политенные

хромосомы — это гигантские хромосомы, обнаруживаемые в интерфазных клет

ках

некоторых тканей у мух и других двукрылых. Такие хромосомы есть у них в клетках

слюнных желез, мальпигиевых сосудов и средней кишки. Они содержат сотни нитей

ДНК, которые редуплицировались, но не подверглись расхождению. При окраске в

них выявляются четко выраженные попе

речные полосы или диски (см. рис. 3.56).

Многие отдельные полосы соответствуют местоположению отдельных генов.

Ограниченное число определенных полос в некоторых дифференцированных

клетках образует вздутия, или пуфы, выступающие за пределы хромосомы. Эти

вздутые участки находятся там, где гены наиболее активны в отношении

транскрипции. Было показано, что клетки разного типа содержат разные пуфы (см.

рис. 3.65). Изменения в клетках, происходящие в ходе развития, коррелируют с

изменениями в характере пуфов и синтезом определенного белка. Других п

римеров

визуального наблюдения генной активности пока нет.

Все остальные этапы экспрессии генов являются результатом сложных

видоизменений продуктов первичной генной активности. Под сложными

изменениями подразумевают посттранскрипционные преобразования РНК,

трансляцию и посттрансляционные процессы.

Имеют

ся данные по изучению количества и качества РНК в ядре и цитоплазме

клеток организмов, находящихся на разных стадиях эмбрионального развития, а

также в клетках различных типов у взрослых особей. Обнаружено, что сложность и

число различных видов ядерной РНК в 5—10 раз выше, чем мРНК. Ядерные РНК,

которые представляют собой первичные продукты транскрипции, всегда длиннее,

чем мРН

К. Кроме того, ядерная РНК, изученная на морском еже, по количеству и

качественному разнообразию идентична на различных стадиях развития особи, а

мРНК цитоплазмы отличается.в клетках разных тканей. Это наблюдение приводит к

мысли о том, что посттранскрипционные механизмы влияют на дифференциальную

экспрессию генов.

Примеры посттранскрипционной ре

гуляции экспрессии генов на уровне

процессинга известны. Мембранно-связанная форма иммуноглобулина IgM у

мышей отличается от растворимой формы дополнительной аминокислотной

последовательностью, позволяющей мембранно-связанной форме «заякориваться» в

клеточной мембране. Оба белка кодируются одним локусом, но процессинг

первичного транскрипта протекает по-разному. Пептидный гормон кальцитонин у

крыс представлен двумя разными белками, детерминированными одним геном. У

них один

аковые первые 78 аминокислот (при общей длине 128 аминокислот), а



375

различия обусловлены процессингом, т.е. опять наблюдается дифференциальная

экспрессия одного и того же гена в различных тканях. Есть и другие примеры.

Вероятно, альтернативный процессинг первичных транскриптов играет очень

важную роль в дифференцировке, однако остается неясным его механизм.

Большая часть мРНК цитоплазмы одинакова по качественному составу в

клетках, относящихся к различным стадиям онтогенеза. мРНК необходи

мы для

обеспечения жизнедеятельности клеток и детерминируются генами «домашнего

хозяйства», представленными в геноме в виде нескольких нуклеотидных

последовательностей со средней частотой повторяемости. Продуктами их

активности являются белки, необходимые для сборки клеточных мембран,

различных субклеточных структур и т.д. Количество этих мРНК составляет

примерно 9/10 от всех мРНК цитоплазмы. Остальные мРНК являют

ся

необходимыми для определенных стадий развития, а также различных типов клеток.

При изучении разнообразия мРНК в почках, печени и головном мозге мышей,

в яйцеводах и печени кур было обнаружено около 12000 различных мРНК. Лишь

10—15% были специфичны для какой-либо одной ткани. Они считываются с

уникальных нуклеотидных последовательностей тех структурных генов, действие

которых специфично в данном мест

е и в данный момент и которые называются

генами «роскоши». Количество их соответствует примерно 1000—2000 генов,

ответственных за дифференцировку клеток.

Не все гены, имеющиеся в клетке, вообще реализуются до этапа образования

мРНК цитоплазмы, но и эти образовавшиеся мРНК не все и не во всяких условиях

реализуются в полипептиды и тем более в сложны

е признаки. Известно, что

некоторые мРНК блокируются на уровне трансляции, будучи в составе

рибонуклеопротеиновых частиц — информосом, вследствие чего происходит

задержка трансляции. Это имеет место в овогенезе, в клетках хрусталика глаза.

В ряде случаев окончательная дифференцировка связана с «достройкой»

молекул ферментов или гормонов или четвертичной структуры белка. Это уже

посттрансляционные события. Например, фермент тирозиназа появляется у

зародышей амфиби

й еще в раннем эмбриогенезе, но переходит в активную форму

лишь после их вылупления.

Другим примером является дифференцировка клеток, при которой они

приобретают способность реагировать на определенные вещества не сразу после

синтеза соответствующего рецептора, а только в определенный момент. Показано,

что мышечные во

локна в своей мембране имеют рецепторы к медиаторному

веществу ацетилхолину. Интересно, однако, что эти холинорецепторы

обнаруживали внутри цитоплазмы клеток-миобластов до образования ими

мышечных волокон, а чувствительность к ацетилхолину возникала только с момента

встраивания рецепторов в плазматическую мембрану во время образования

мышечных трубочек и мышечных волокон. Этот пример показывает, что экспрессия

генов и тканев

ая дифференцировка могут регулироваться после трансляции в

процессе межклеточных взаимодействий.

Таким образом, дифференцировка клеток не сводится только к синтезу



376

специфических белков, поэтому применительно к многоклеточному организму эта

проблема неотрывна от пространственно-временных аспектов и, следовательно, от

еще более высоких уровней ее регуляции, нежели уровни регуляций биосинтеза

белка на клеточном уровне. Дифференцировка всегда затрагивает группу клеток и

соответствует задачам обеспечения целостности многоклеточного организма.

8.2.6. Эмбриональная индукция

Эмбриональная индукция — это взаимодействие частей развивающегося

зародыша, при котором один участок зародыша влияет на судьбу другого участка.

Явление эмбриональной индукции с начала XX в. изучает экспериментальная

эмбриология.

Классическими считают опыты немецкого ученого Г. Шпемана и его

сотрудников (1924) на зародышах амфибий. Для того чтобы иметь возможность

проследить за судьбой клеток определенного участка зародыша, Шпеман

использовал два вида тритонов: тритона гребенч

атого, яйца которого лишены

пигмента и потому имеют белый цвет, и тритона полосатого, яйца которого

благодаря пигменту имеют желто-серый цвет.

Один из опытов заключается в следующем: кусочек зародыша из области

дорсальной губы бластопора на стадии гаструлы тритона гребенчатого

пересаживают на боковую или вентральную сторону гаструлы тритона полосатого

(рис. 8.8).

В месте пересадки происходит развитие нервной трубки, хорды и других

органов. Развитие может достичь довольно продвинутых стадий с образованием

дополнительного зародыша на боковой или вентральной стороне зародыша

реципиента. Дополнительный зародыш содержит в основном клетки зародыша

реципиента, но светлые клетки зародыша-донора тоже обнаруживаются в составе

различных органов.

Рис. 8.8. Пересадка спинной губы от зародыша-донора на брюшную сторону

зародыша-реципиента. А—схема опыта; Б—поперечный срез на стадии закладки



377

двух комплексов осевых органов:

1—первичный зародыш, 2—вторичный, индуцированный зародыш

Из этого и подобных опытов следует несколько выводов. Во-первых, участок,

взятый из спинной губы бластопора, способен направлять или даже переключать

развитие того материала, который находится вокруг него, на определенный путь

развития. Он как бы организует, или индуцирует, развитие зародыша как в обычном,

так и в нетипичном месте. Во-вторых, боковая и брюшная стороны гаструлы

обладают более широкими потенциями к развитию, нежели их презумптивное

(предполагаемо

е) проспективное направление, так как вместо обычной поверхности

тела в условиях эксперимента там образуется целый зародыш. В-третьих,

достаточно точное строение новообразованных органов в месте пересадки

указывает на эмбриональную регуляцию. Это означает, что фактор целостности

организма приводит к достижению хорошего конечного результата из нетипичных

клеток в нетипичном месте, как бы управляя процессом, регулируя его в целях

достижения этого результата.

Г. Шпеман назвал спинную губу бластопора первичным эмбриональны

организатором. Первичным потому, что на более ранних стадиях развития

подобных влияний обнаружи

ть не удавалось, а организатором потому, что влияние

происходило именно на морфогенез. В настоящее время установлено, что главная

роль в спинной губе бластопора принадлежит хордомезодермальному зачатку,

который назвали первичным эмбриональным индуктором, а само явление, при

котором один участок зародыша влияет на судьбы другого,— эмбриональной

индукцией.

В 30-е гг. исследователи пытались установить природу индуцирующего

действия. Вскоре выяснилось, что разнообразн

ые убитые ткани, вытяжки из самых

различных тканей беспозвоночных и позвоночных животных, а также растений,

несколько классов химических соединений (белки, нуклеопротеины, стероиды и

даже неорганические вещества) могут вызывать индукцию. Таким образом была

установлена химическая природа организаторов. Одновременно стало ясно, что

специфичность ответа прямо не связ

ана с. химическими свойствами индуктора.

Внимание эмбриологов переключилось на индуцируемые ткани. Оказалось,

что специфичность действия индуктора-раздражителя может быть весьма

различной, а сам эффект индуцирующего воздействия ограничивается

способностью того или иного участка развивающегося зародыша воспринимать это

воздействие и отвечать на него.

Некоторые индукторы, по-видимому, более или менее специфичны в

определении судь

бы индуцируемой ткани. Об этом свидетельствуют следующие

опыты. Если пересадить спинную губу ранней гаструлы, то индуцируется развитие

структур переднего мозга (головной индуктор), если же пересадить спинную губу

поздней гаструлы, то развиваются спинной мозг и мезодермальные ткани

(туловищный индуктор, рис. 8.9). Было показано также, что наиболее сильное

нейрализующее влияние оказыв

ает фракция нуклеопротеинов, а

мезодермализующим индуктором оказался белок. Если имплантировать оба эти



378

индуктора в виде смеси клеток или смеси веществ, то получаются хорошо развитые

зародыши.

Рис. 8.9. Результаты пересадки головного (А) и туловищного (Б) индукторов

Объяснение см. в тексте

Другие индукторы действуют как неспецифические пусковые механизмы, как

бы высвобождая ответ, уже детерминированный в клетках индуцируемой ткани.

Было показано, что, например, слуховой пузырек выступает не только в роли

индуктора слухового аппарата, но и является активатором различных

морфогенетических процессов. Будучи пересажен в область боковой линии

эмбриона тритона, он влечет за собой индукцию конечности. Ко

нечность можно

индуцировать также пересадкой носовой плакоды или гипофиза. Легче всего

добавочные конечности индуцируются в области боковой линии, но они могут быть

получены и на брюшной стороне. Эти примеры указывают на то, что специфический

ответ зависит не сто

лько от индуктора, сколько отреагирующей области.

Способность эмбрионального материала реагировать на различного рода

влияния изменением своей презумптивной судьбы получила название компетенции.

Установлено, например, что компетенция к образованию нервной системы у

амфибий затрагивает всю эмбриональную эктодерму и возникает с момента начала

гаструляции. К концу гаструляции эта компетенция прекращается. Таким образом,

изменение хода развития возможно лишь в том случ

ае, если область компетенции к

образованию некоторой закладки шире, чем область, из которой она в норме

развивается, а также если индукционное действие происходит в определенный

интервал онтогенетического развития.

Изучение индукционных взаимодействий у разных представителей типа

хордовых показало, что области и сроки компетенции неодинаковы. Так, у асцидий

на ст

адии 8 бластомеров, когда уже все основные зачатки предопределены,

проводили некоторые перемещения бластомеров. Материал хордомезодермы и

основная часть нейрального материала у них локализованы в заднем вегетативном

бластомере. Небольшая часть нейрального материала, формирующего головной

ганглий, находится в заднем анимальном бластомере, расположенном над задним

вегетативным (рис. 8.10).

Для проверки индукционных взаимодействий между ними анимальный ярус

бласто

меров поворачивали на 180° так, чтобы задний анимальный бластомер терял



379

контакт с задним вегетативным. Головной ганглий не развился нигде. Это означает,

что для развития головного ганглия необходимо индукционное влияние на задний

анимальный бластомер со стороны заднего вегетативного. Кроме того, очевидно,

что задний анимальный бластомер не обладает автономностью развития, но только

он компетентен к восприятию воздействия со стороны заднего вегетативного

бластомера, содержащего хордомезодермальный зачаток.

Рис. 8.10. Карта презумптивных зачатков у зародыша асцидий

на стадии восьми бластомеров:

1—эпидермис, 2—нервная пластинка, 3—хорда, 4—энтодерма, 5—сомиты, 6—

мезенхима

Во всех других классах хордовых индукционные взаимодействия между

хордомезодермальным и нейральным зачатками подобны таковым у амфибий.

Полагают, что в ходе эволюции хордовых произошли расширение областей и

удлинение срока компетенции. Это расцени

вают как признак существенного

эволюционного прогресса.

Явления индукции многочисленны и разнообразны. Помимо первичной

индукции со стороны спинной губы бластопора описаны индукционные влияния на

более поздних, нежели гаструляция, этапах развития. Все они являются вторичными

и третичными, представляя собой каскадные взаимодействия, типичные для

дифференцировки, потому что индукция многих структур зависит от

предшест

вующих индукционных событий. Примером вторичной индукции может

служить действие глазного бокала (выпячивание переднего мозга) на прилежащий

покровный эпителий, под влиянием чего эпителий впячивается, а затем

отшнуровывается хрусталиковый пузырек—зачаток глазного хрусталика (рис. 8.11).

Расположенный над хрусталиком покровный эпителий тоже испытывает сложные

изменения, теряет пигмент и становится роговичным эпителием. Это пример

третичной индукции. Таки

м образом получается, что глазной бокал возникает



380

только после развития передней части головного мозга, хрусталик — после

формирования бокала, а роговица — после образования хрусталика.

Вместе с тем индукция носит не только каскадный, но и переплетающийся

характер, т.е. в индукции той или иной структуры может участвовать не одна, а

несколько тканей. В свою очередь, такая структура может служить индуктором для

нескольки

х других тканей. Например, глазной бокал служит главным, но не

единственным индуктором хрусталика. Морфогенез всегда сопровождается

значительными перемещениями тканей друг относительно друга. Так,

презумптивный хрусталик, т.е. эпидермис, из которого в последующем должен

развиться хрусталик, во время гаструляции лежит над энтодермой будущей глотки,

которая служит первым индуктором хрусталика. Затем под этим эпидермисо

оказывается сердечная мезодерма, которая тоже действует как индуктор. И только

позднее, во время нейруляции на переднем конце нервной трубки выпячиваются

глазные пузыри, образующие глазной бокал и сетчатку, являющуюся главным

индуктором хрусталика (рис. 8.12).

Рис. 8.11. Развитие (А —Г) глаза у хвостатой амфибии:

1—хрусталиковая плакода, 2—пигментный эпителий, 3—сетчатка, 4—роговица, 5—

хрусталиковые волокна, 6—хрусталиковый эпителий, 7—глазной бокал

Рис. 8.12. Последовательные индукционные взаимодействия,

необходимые для образования хрусталика у зародыша амфибии: