Калинина О.С., Паникар И.И., Скибицкий В.Г. Ветеринарная вирусология

Подождите немного. Документ загружается.

Лабораторна діагностика вірусних хвороб

305

Диплоїдні культури клітин (син.: диплоїдні клітинні лі-

нії) — це морфологічно однорідні популяції клітин, стабілізовані в

процесі культивування in vitro, які мають обмежений строк життя,

характеризуються трьома фазами росту, зберігають каріотип, влас-

тивий вихідній тканині, вільні від контамінантів і не виявляють

онкогенної активності при трансплантації хом’ячкам.

Диплоїдні культури клітин отримані з різних тканин ембріона

людини (легені, нирки, серце, шкірно-м’язова тканина та ін.) і тва-

рин (нирки ембріонів корів, овець, свиней; нирки телят, ягнят, поро-

сят; шкіра, тимус, селезінка, кістковий мозок і лімфатичні вузли кро-

лів і морських свинок та ін.). Одержання диплоїдної культури клі-

тин проходить у три етапи: 1) виготовлення посівного пулу клітин і

заморожування його основної частини; 2) контроль диплоїдності;

3) нагромадження диплоїдних клітин безпосередньо для розмножен-

ня вірусів. Строк життя диплоїдної культури клітин обмежений —

40 – 60 пасажів. Далі поступово настає дегенерація клітин.

Диплоїдні культури мають переваги порівняно з первинними й

перещеплюваними. Вони стерильні щодо вірусних контамінантів і

мікоплазм, позбавлені онкогенної активності, здатні роками збері-

гатися в замороженому стані. Тому диплоїдні культури клітин є оп-

тимальною системою для культивування вірусів.

Для виділення вірусів, які важко адаптуються до культур клітин,

використовують метод співкультивування. Він полягає в одно-

часному культивуванні клітин трипсинізованої зараженої тканини і

чутливих клітин моношарової культури (зокрема перещеплюваної).

Цей метод застосовують при вивченні хронічних і повільних вірус-

них інфекцій.

При латентних інфекціях нечасто вдається виділити вірус тради-

ційним шляхом зараження клітинних культур суспензією з патологіч-

ного матеріалу. У таких випадках застосовують метод культивуван-

ня уражених тканин: із дослідного матеріалу готують первинні ку-

льтури клітин, що призводить до демаскування латентного збудника.

Для виділення вірусів використовують також органні культу-

ри. Це підтримання in vitro фрагментів органів і тканин при збе-

реженні їхньої структури та функції. Органні культури не здатні до

розмноження. В органних культурах успішно вирощують шматочки

слизових оболонок носа і трахеї, бронхів, легень, печінки, кишок,

нирок та інших тканин. При вивченні респіраторних вірусних інфек-

цій широке застосування знайшов метод органного культивування

носового, трахеального і бронхіального епітелію. При цьому шмато-

чки тканини розміром 1 – 3 мм вміщують у чашку Петрі, вносять

живильне середовище (агар, зсіла плазма або синтетичне) в такій

кількості, щоб фрагменти тканини знаходилися на його поверхні.

Поживні речовини проникають в експлантат шляхом дифузії. Це

створює умови для збереження органоспецифічної диференціації

Розділ 11

306

експлантата при відсутності або помірному розростанні його тка-

нин. При цьому зберігається не тільки структура тканини, а й деякі

функціональні особливості, наприклад, миготіння війок, яке при-

пиняється внаслідок репродукції вірусів.

Розчини і живильні середовища для культури клітин. Ро-

бота з культурою клітин потребує абсолютної стерильності, ретель-

ної підготовки посуду, відповідних розчинів, живильних середовищ

і високої якості води.

Для виготовлення живильних середовищ і при різних маніпуля-

ціях із культурою клітин (відмивання тканини від кров’яних елемен-

тів, відмивання культури від ростового середовища, розведення ві-

русу) використовують збалансовані сольові розчини Хенкса та Ерла.

Вони містять солі натрію, калію, магнію й кальцію, а також глюко-

зу, що забезпечує збереження рН, осмотичного тиску в клітинах і

відповідну концентрацію потрібних неорганічних речовин. Для кон-

тролю рН до складу розчинів Хенкса та Ерла часто включають ін-

дикатор феноловий червоний (0,002 %).

Диспергувальний 0,25%-й розчин трипсину застосовують для

дезагрегації тканини на окремі клітини і для зняття клітин зі скла

при пересіві. Диспергувальний 0,02%-й розчин версену (натрієва

сіль етилендиамінтетраоцтової кислоти) використовують для зняття

клітин зі скла.

Для вирощування культури клітин широкого застосування на-

були синтетичні середовища 199 та Ігла. До складу середовища

199 входить понад 60 компонентів: 20 амінокислот, 16 вітамінів,

складові частини нуклеїнових кислот (пурини, піримідини), кофер-

менти, відновники, джерела ліпідів і вуглеводів, 7 мінеральних со-

лей, глюкоза. До складу середовища Ігла входить 13 амінокислот, 8

вітамінів, 6 мінеральних солей, глюкоза. Крім того, використовують

напівсинтетичні середовища, які є ферментативними гідролізата-

ми різних білкових речовин, найчастіше 0,5%-й розчин гідролізату

лактоальбуміну (середовище ГЛА).

До всіх живильних середовищ додають індикатор феноловий чер-

воний (0,002 %) для контролю рН. При нейтральному значенні рН

колір середовища червоно-оранжевий. У міру закисання продукта-

ми метаболізму клітин рН середовища знижується, і воно поступово

жовтіє, що є сигналом для його заміни. При зрушенні рН у лужний

бік середовище стає малинового кольору з фіолетовим відтінком.

Це, як правило, буває тоді, коли пробірки або матраци, де

культивуються клітини, нещільно закриті гумовими пробками.

Для знищення бактеріальної мікрофлори до живильних середо-

вищ і розчинів додають антибіотики: 100 ОД/см

пеніциліну і

100 мкг/см

стрептоміцину. За потреби використовують ністатин

50 ОД/см

для пригнічення плісені.

За призначенням живильні середовища поділяють на дві групи:

ростові та підтримувальні. Ростові середовища застосовують у перші

Лабораторна діагностика вірусних хвороб

дні культивування клітин; вони забезпечують життя і розмноження

клітин. До складу ростових середовищ входить 2 – 10 % сироватки

крові (частіше ВРХ), що містить фактори адгезії й росту, без яких

клітини не зможуть прикріпитися до скла і ділитися. Підтриму-

вальні середовища не містять сироватки крові; вони забезпечують

життєдіяльність клітин і використовуються після формування мо-

ношару та зараження культури клітин вірусом.

Консервування культур клітин. Клітинні культури часто необ-

хідно законсервувати, щоб мати запас клітин із певною біологічною

характеристикою. Це стосується насамперед диплоїдних і перещеп-

люваних клітинних ліній. На сьогоднішній день із тканин людини і

тварин одержані тисячі клітинних ліній, які зберігаються в націо-

нальних банках клітинних культур різних країн. Так, Американська

типова колекція культур (АТСС) має інформацію про походження

близько 6000 ліній і штамів клітин понад 40 видів тварин.

Найкращим методом консервування клітин є заморожування в

рідкому азоті (–196 °С). При цьому клітини мають майже необмеже-

ний строк зберігання при повній відсутності ризику механічного по-

шкодження. Для консервування в рідкому азоті клітини знімають зі

скла матраців трипсином або версеном і суспендують у живильному

середовищі в концентрації 10

клітин на 1 см

. Як захисні речовини

до середовища додають 10 – 40 % сироватки крові ВРХ і 10 % диме-

тилсульфоксиду або гліцерину. Суспензію розливають в ампули по

3 см

, запаюють і витримують 1 – 2 год при 4 °С для контакту з кон-

сервантом. Потім клітини заморожують у суміші етилового спирту із

сухим льодом до –70 °С, поступово знижуючи температуру, і вміщу-

ють на зберігання в посудини Дюара з рідким азотом.

Життєздатність заморожених клітин відновлюють так. Ампулу

вміщують у водяну баню з температурою 37 °С на 1 – 2 хв при лег-

кому струшуванні. Потім суспензію клітин виливають у матрац, до-

дають відповідну кількість ростового середовища і культивують у

термостаті при 37 °С. Через добу змінюють середовище для вида-

лення консерванту.

Транспортують культури клітин у матрацах із моношаром, які

доверху заливають живильним середовищем із 5 % сироватки крові

ВРХ. Можна транспортувати суспензію клітин при 4 °С. За сприят-

ливих умов, що виключають перегрівання або заморожування клі-

тин, 80 – 90 % їх зберігає життєздатність упродовж 7 – 8 діб.

Індикація вірусів у культурі клітин. Методика зараження

культури клітин проста. З пробірок або матраців із сформованим

моношаром клітин зливають ростове середовище, культуру проми-

вають 1 – 2 рази розчином Хенкса. У пробірки вносять по 0,1 –

0,2 см

вірусовмісного матеріалу і залишають на 1 – 2 год за кімнат-

ної температури або при 37 °С для адсорбції вірусу на поверхні клі-

тин. Кожною пробою заражають по 4 – 10 пробірок із культурою клі-

Розділ 11

308

тин. У матраци вносять вірусовмісний матеріал у кількості 1 – 1,5 %

від об’єму. Після контакту вірусовмісний матеріал видаляють і до-

дають підтримувальне середовище: в пробірки — по 1 см

, у матра-

ци — 10 – 15 % від об’єму.

При виділенні вірусу з патологічного матеріалу деякі проби (на-

приклад, кал) можуть мати токсичну дію на клітини. Тому після

адсорбції вірусу моношар клітин відмивають 1 – 2 рази розчином

Хенкса (або живильним середовищем), а потім наливають підтри-

мувальне середовище. Пробірки і матраци ставлять у термостат при

37 °С і щодня розглядають під малим збільшенням мікроскопа.

Основною ознакою розмноження вірусу в культурі клітин є ци-

топатогенна дія (ЦПД), або цитопатичний ефект (ЦПЕ). Це

Рис. 82. Первинна культура клітин сім’яників теляти

(Н.В. Ліхачов та ін., 1973):

а — незаражена; б — заражена вірусом нодулярного дерматиту ВРХ

Рис. 83. Перещеплювана куль-

тура клітин МDВК, заражена

аденовірусом ВРХ

(В.М. Сюрін та ін., 1991)

Рис. 84. Первинна культура клітин

фібробластів курячого ембріона,

заражена вірусом хвороби Ауєскі

(В.М. Сюрін та ін., 1991)

Лабораторна діагностика вірусних хвороб

309

будь-які морфологічні зміни клітин, які виникають унаслідок репро-

дукції вірусу (рис. 82, 83, 84). Розрізняють три основні форми ЦПД:

1) округлення клітин — під дією вірусу клітини, що в нормі роз-

пластані на склі, втрачають зв’язки між собою, зморщуються, округ-

люються, відділяються від скла, переходять у культуральну рідину і

гинуть;

2) фрагментація клітин — під дією вірусу клітини розпадають-

ся на окремі фрагменти, відділяються від скла і переходять у куль-

туральну рідину у вигляді клітинного детриту;

3) утворення симпластів (син.: синцитії, полікаріоцити) —

під дією вірусу плазматичні мембрани сусідніх клітин зливаються й

утворюються гігантські багатоядерні клітини.

ЦПД проявляється через 3 – 14 діб (залежно від виду вірусу і ти-

пу культури клітин) та оцінюється в плюсах:

+ (25 %) — деструкція окремих клітин культури;

++ (50 %) — деструкція половини клітин культури;

+++ (75 %) — деструкція більшості клітин культури, утворення

пустот у моношарі внаслідок відривання клітин від скла;

++++ (100 %) — деструкція всіх клітин культури, на склі зали-

шаються невеликі осередки змінених клітин.

Для одержання максимальної концентрації вірусу пробірки і мат-

раци із зараженою культурою клітин виймають із термостату на

кінцевих стадіях ЦПД (3 – 4 плюси).

Вірус, який розмножується в культурі клітин, нагромаджується

поступово в культуральній рідині. Але частина вірусу може зали-

шатися в незруйнованих клітинах. Для звільнення клітинно-

зв’язаного вірусу клітини дезінтегрують 2 – 3-разовим заморожуван-

ням – відтаванням або ультразвуком.

ЦПД вірусів потрібно відрізняти від неспецифічної дегенерації

клітин, що спостерігається при старінні культури. Тому для контро-

лю залишають 4 – 6 пробірок із незараженою культурою, в яких

лише змінюють середовище. Крім того, слід пам’ятати про дегене-

рацію клітин, зумовлену токсичною дією дослідного матеріалу. Для

виключення цього в разі потреби проводять додатковий пасаж: ін-

фікованою культуральною рідиною заражають нові пробірки з

культурою клітин. Якщо дегенерація була зумовлена токсичним

фактором, то ЦПД у другому пасажі не проявляється.

Характерним для ЦПД багатьох вірусів є утворення внутріш-

ньоклітинних тілець-включень. Для їхнього виявлення куль-

туру клітин вирощують на покривних скельцях у пробірках або пе-

ніцилінових флаконах, заражають дослідним матеріалом, інкубу-

ють при 37 °С (строки інкубації залежать від властивостей вірусу).

Потім скельця виймають, промивають 0,9%-м розчином NaCl

(рН = 7,0…7,2) або розчином Хенкса, підсушують фільтрувальним

папером і фіксують певним методом. З цією метою найчастіше за-

Розділ 11

310

стосовують фіксатори Буена (10 – 15 хв), Карнуа (10 хв), Ценкера

(20 – 30 хв) або метиловий спирт (15 хв). Фіксовані препарати фар-

бують гематоксилін-еозином:

1) гематоксилін (Майєра, Ерліха або Карацці) — 5 – 15 хв, про-

мивають дистильованою водою;

2) солянокислий спирт (100 см

70%-го спирту + 2 – 3 краплі со-

ляної кислоти) — кілька секунд, промивають дистильованою водою;

3) аміачна вода (200 см

дистильованої води + 2 – 3 краплі аміа-

ку) — 1 – 2 хв;

4) 0,1% водний розчин еозину — 0,5 – 1 хв, промивають дисти-

льованою водою, висушують фільтрувальним папером;

5) спирти: 70%-й, 80%-й, 96%-й (1), 96%-й (2), 100%-й спирт-

ксилол (1 : 1), ксилол (1), ксилол (2) — по 1 хв (щоразу препарати

висушують фільтрувальним папером);

6) вміщення в бальзам.

При фарбуванні гематоксилін-еозином ядра клітин забарвлю-

ються в синій колір, цитоплазма — в рожевий, а тільця-включен-

ня — в синій (базофільні) чи рожевий колір (ацидофільні, або еози-

нофільні), що залежить від властивостей вірусу.

Тільця-включення можна виявити в культурі клітин методом

простого флуорохромування. Препарати фіксують в ацетоні (10 –

15 хв) або етиловому спирті (15 – 30 хв), фарбують 5 – 10 хв акриди-

новим оранжевим у розведенні 1 : 10 тис., промивають дистильова-

ною водою, висушують і досліджують у люмінесцентному мікроско-

пі. ДНК-вмісні тільця-включення дають гранулярне смарагдово-

зелене або жовто-зелене світіння, а РНК-вмісні — червоно-

оранжеве, демонстративно виділяючись на буро-сірому фоні клітин

і загальному чорному фоні препарату.

Деякі онкогенні віруси (зокрема саркоми Рауса) можуть спри-

чинити в культурі клітин ци-

топроліферативний (або

трансформувальний) ефект.

Він полягає в утворенні фокусів

трансформації, що складаються

зі скупчень кількох шарів окру-

глих клітин, які під впливом

вірусу втратили властивість ко-

нтактної інгібіції й набули здат-

ності до безперервного поділу

(рис. 85).

Індикацію вірусів у культурі

клітин можна провести за яви-

щем гемадсорбції. Це прикріп-

лення еритроцитів до поверхні

клітин, заражених гемаглютину-

Рис. 85. Трансформувальний ефект

вірусу саркоми Рауса в первинній

культурі клітин фібробластів

курячого ембріона

(В.Д. Тімаков, 1985)

Лабораторна діагностика вірусних хвороб

311

вальним вірусом (наприклад, грипу ссавців і птахів, парагрипу-3 ВРХ,

ньюкаслської хвороби). Гемадсорбція виникає за рахунок вірусного

білка гемаглютиніну, який модифікує клітинну плазматичну мембра-

ну, і вона стає спорідненою з рецепторами еритроцитів. Кожний вірус

здатний спричинити гемадсорбцію еритроцитів того виду, який він

аглютинує, причому гемадсорбція виявляється швидше, ніж ЦПД.

Для постановки реакції гемадсорбції (РГАд) у 2 – 4 пробірки з ін-

фікованою культурою клітин через 3 – 5 діб після зараження вносять

по 0,2 см

0,4 – 0,5%-ї суспензії еритроцитів певного виду. Пробірки

витримують у горизонтальному положенні 10 – 15 хв за кімнатної

температури або 30 – 40 хв при +4 °С (залежно від виду вірусу), злег-

ка струшують і розглядають під малим збільшенням мікроскопа. Для

контролю такі самі маніпуляції проводять із незараженою культурою

клітин. Реакція вважається позитивною, якщо в пробірках з інфіко-

ваною культурою еритроцити прикріпилися до поверхні клітин, а в

контрольних — гемадсорбції немає. Гемадсорбція буває дифузною,

осередковою або тільки по периферії моношару у вигляді «намиста»,

що залежить від виду вірусу і культури клітин (рис. 86, 87).

Бувають випадки, коли вірус не має гемаглютинувальних влас-

тивостей, але разом з тим проявляє гемадсорбцію. Це стосується,

зокрема, вірусу африканської чуми свиней. Механізм гемадсорбції

цього вірусу невідомий. Припускається наявність у вірусі гемадсор-

бівного антигену.

Для індикації вірусів у культурі клітин можна застосовувати ме-

тод бляшок. Це обмежені осередки загиблих під дією вірусу клітин

у суцільному моношарі культури. Для одержання бляшок культуру

клітин, вирощену в матрацах, промивають розчином Хенкса і зара-

жають вірусом (у невисокій концентрації). Після контакту 1 – 2 год

при +37 °С видаляють вірусовмісну рідину і вносять спеціальне

агарове покриття, до складу якого входять такі компоненти: агар,

Рис. 86. Гемадсорбція з еритроци-

тами морської свинки в первинній

культурі клітин нирок теляти, за-

раженій вірусом парагрипу-3 ВРХ

(Г. Штарке та ін., 1970)

Рис. 87. Гемадсорбція з еритроци-

тами курки в первинній культурі

клітин фібробластів курячого емб-

ріона, зараженій вірусом ньюкасл-

ської хвороби

(І.І. Панікар, 1997)

Розділ 11

312

розчин Ерла, сироватка крові ВРХ, натрію гідрокарбонат, антибіо-

тики та індикатор нейтральний червоний. Усі компоненти змішу-

ють у певному співвідношенні за температури +50…+55 °С. При

нашаруванні на культуру середовище охолоджують до +37 °С. Через

30 – 60 хв після застигання середовища матраци вміщують у термо-

стат при +37 °С, загорнувши у світлонепроникний матеріал, бо ін-

дикатор має фотодинамічний вплив на клітини і за доступу світла

може інгібувати утворення бляшок. Інкубацію проводять клітинами

догори. Спостерігають за появою бляшок упродовж 4 – 12 діб.

За цей час адсорбований вірус проникає всередину клітин, про-

ходить повний цикл репродукції. Віріони потомства можуть уража-

ти лише сусідні клітини, оскільки культура вкрита агаровим

середовищем, що обмежує поширення вірусу. Тому в суцільному мо-

ношарі живих клітин виникають осередки зруйнованих клітин як

наслідок репродукції вірусу. Над живими клітинами середовище

закисається продуктами метаболізму і стає червоно-рожевого

кольору. Над осередками загиблих клітин середовище безбарвне. Це

і є бляшки (рис. 88, 89). Кожна бляшка є результатом розмноження

одного віріона, але за умови інфікування культури високими

розведеннями вірусу, щоб виключити множинність зараження

клітин. При високій концентрації вірусу бляшки зливаються.

Час появи і морфологія бляшок залежать від виду і штаму віру-

су, типу культури клітин та умов культивування. Деякі віруси утво-

рюють бляшки без агарового покриття, що пов’язано з

особливостями їхньої репродукції (наприклад, вірус хвороби Маре-

ка).

Метод бляшок технічно складний для виконання, тому викорис-

товується в основному для титрування вірусів, а також із метою оде-

ржання генетично однорідних популяцій вірусів (клонів) при дослі-

дженні їхніх генетичних властивостей.

Рис. 88. Бляшки в первинній культурі клітин фібробластів курячого

ембріона, зараженій вірусами віспи корів (а) і вісповакцини (б)

(Н.В. Ліхачов та ін., 1973)

Лабораторна діагностика вірусних хвороб

313

Існують нецитопатогенні віруси, які розмножуються в культурі клі-

тин без прояву ЦПД. Для їхньої індикації використовують методи, які

ґрунтуються на явищах інтерференції та екзальтації вірусів.

Інтерференція — це здатність деяких вірусів пригнічувати

репродукцію інших. На основі інтерференції можна виявити в куль-

турі клітин нецитопатогенні віруси шляхом спільного культивуван-

ня їх із цитопатогенними агентами, репродукцію яких вони галь-

мують. Так, якщо культуру клітин заразити спочатку

нецитопатогенним вірусом чуми свиней, а потім вірусом ящуру, то

ЦПД вірусу ящуру не проявляється внаслідок явища інтерференції.

Або другий приклад: нецитопатогенні штами вірусу трансмісивного

гастроентериту свиней гальмують розвиток ЦПД вірусу діареї ВРХ.

Феномен екзальтації полягає в прояві ЦПД у культурі клітин,

зараженій двома вірусами: один із них нецитопатогенний, а

другий — цитопатогенний, але в цій культурі не розмножується.

Наприклад, екзальтація вірусу ньюкаслської хвороби вірусом чуми

свиней у культурі клітин сім’яників поросят (клітини, заражені не-

цитопатогенним вірусом чуми свиней, під дією вірусу ньюкаслської

хвороби лізуються). Другий приклад: екзальтація вірусу ньюкасл-

ської хвороби в культурі клітин сім’яників телят у присутності не-

цитопатогенного штаму вірусу діареї ВРХ.

Орієнтовним методом виявлення вірусів у культурі клітин є ко-

льорова проба. Вона полягає в тому, що в незаражених культурах

під впливом продуктів метаболізму клітин середовище, яке містить

індикатор феноловий червоний, закисається і стає жовтого кольору. У

той час у заражених культурах клітини гинуть під дією вірусу, і сере-

довище зберігає червоний колір. Найчіткіші результати дають віруси

з високою швидкістю репродукції при культивуванні їх у культурах,

які повільно ростуть. Достовірність кольорової проби невисока, тому

цей метод використовується у вірусологічній практиці нечасто.

а б в

Рис. 89. Бляшки в первинній культурі клітин нирок мавпи, зараженій ві-

русами поліомієліту (а), Коксакі (б) та ЕСНО (в)

(Ш.С. Ніколау та ін., 1965)

Розділ 11

314

Для індикації та ідентифікації вірусів у клітинах зараженої

культури застосовують також ЕМ, РІФ та ІФА.

ТИТРУВАННЯ ВІРУСІВ

При виділенні вірусів виникає потреба кількісного визначення їх

в одиниці об’єму вірусовмісного матеріалу, що важливо для наступ-

ної ідентифікації збудника. Віруси титрують за інфекційною та ге-

маглютинувальною активністю, відповідно визначають інфекцій-

ний і гемаглютинувальний титри.

ТИТРУВАННЯ ВІРУСІВ ЗА ІНФЕКЦІЙНОЮ АКТИВНІСТЮ

Оскільки чутливість біологічних систем до вірусів (навіть високо-

вірулентних штамів) коливається в широких межах, інфекційний

титр у переважній більшості випадків можна визначити як статис-

тичну величину. За одиницю інфекційного титру прийнята 50%-ва

ефективна доза — ЕД

. Це така доза вірусу, яка спричиняє ін-

фекційний ефект у 50 % заражених біологічних систем. Залежно від

виду тест-об’єкта і форми прояву інфекційної дії вірусу ЕД

назива-

ється по-різному в кожному конкретному випадку (табл. 5).

Таблиця 5. Значення ЕД

Тест-об’єкти Інфекційна дія вірусу Назва ЕД

Загибель ЛД

— 50%-ва летальна доза Лабораторні

тварини

Клінічні ознаки або патолого-

анатомічні зміни

ІД

— 50%-ва інфекційна доза

Загибель ЕЛД

50 —

50%-ва ембріональна

летальна доза

Курячі ембріо-

ни

Патологоанатомічні зміни

ЕІД

— 50%-ва ембріональна

інфекційна доза

Культура клі-

тин

Цитопатичний ефект ТЦД

— 50%-ва тканинна ци-

топатична доза

Для визначення ЕД

готують ряд послідовних 10-разових розве-

день вірусу на 0,9%-му розчині NaCl, розчині Хенкса або середовищі

для культури клітин (залежно від виду тест-об’єкта). У кінцевих

розведеннях інфекційна дія вірусу не повинна проявлятися. Кож-

ним розведенням вірусу в однаковому об’ємі заражають однакову

кількість чутливих тест-об’єктів (не менше 4). Спостерігають упро-

довж 5 – 12 діб, враховують результати дії вірусу (загибель, клінічні

ознаки, патологоанатомічні зміни чи ЦПД). Розведення вірусу, яке

зумовлює 50%-й інфекційний ефект, розраховують статистичними

методами, найчастіше за методом Ріда і Менча або методом Кербе-

ра. Потім визначають, скільки ЕД

містить такий самий об’єм не-